临床微生物标本采集指南

Step 1. 

血液标本的采集与处理

1.消毒

1)    培养瓶的消毒：用70~75%异丙基乙醇消毒橡胶塞30s 。

2)    静脉穿刺消毒：严格按照皮肤消毒步骤（酒精-碘酊-酒精）。 

2.时机

采血时机：在寒战出现或发热初期采血培养最佳。

3.采血次数

1)   急性脓毒血症：10min内从不同部位采2~3套（1套指1瓶需氧、1瓶厌氧） 。

2)   急性心内膜炎：1~2h内从不同部位采3套。

3)   亚急性心内膜炎：从不同部位采3套，间隔≤15min，如24h内为阴性，需再次采集3套。

4)   原因不明发热，从不同部位采2~3套，间隔≥1h，如24h内阴性，需再次采集3套 。

4.采集血量

1)   儿童1~3ml/瓶，成人5~10ml/瓶。

2)   标本采集后立即送检，如不能立即送检，应置于温室，禁止放置冰箱。

 5.核对信息

目前我们医院采集双侧三瓶血，务请标明左右侧或是导管侧、导管对侧。并把标本瓶连号贴码贴于化验单上。

Step 2. 

脑脊液、骨髓标本的采集与处理

1.   注意彻底消毒，因许多微生物，尤其葡萄球菌属通常存在皮肤表面或近表层处，易造成污染 。

2.   尽可能多采集标本，以便行革兰染色，更早给临床初步报告。

3.   标本采集后立即送检，如不能立即送检，应置于温室，禁止放置冰箱。

Step 3. 

脓液标本

采集前用无菌盐水或75%酒精彻底清创，以除去表面细菌 ，然后用生理盐水冲洗以去除残余消毒液的影响，用无菌针筒穿刺法抽吸深部脓液，或从伤口深处采集渗出物的拭子标本。

注意：关于此类标本其标本来源尤为重要，务请临床注明标本来源部位。

Step 4. 

静脉导管与引流液

静脉导管：用75%酒精消毒导管周围皮肤，将导管末端约5cm移入无菌管中。

引流液：用75%酒精消毒导管采集部分，用注射器从引流管无菌采2~3ml。

注意：

1.标本不能直接从引流袋放出，因引流液在袋中滞留时间太长容易孳生细菌。

2.需在换引流管24h内，无菌抽取，超过24h常常污染。

Step 5. 

眼结膜（眼拭子）与

痰液

眼结膜（眼拭子）：建议在床边接种，采集时，须避免感染蔓延至眼部临近区域。

注意：必须注明标本来源，左眼/右眼。立即常温送检。

痰液：温开水清洗或漱口去除口腔表面菌。指导病人从肺深部咳出痰液，采集到无菌容器内。对于不能自主留取标本的病人，应经抽吸获得。

Step 6. 

鼻、咽 、喉、粪便标本

1.  鼻：用无菌盐水湿润的拭子插入鼻孔约2cm，对鼻粘膜用力旋转 

2.  咽：用无菌拭子经鼻轻轻插入鼻咽后部，慢慢旋转拭子5s，吸收分泌物。

3.  喉：用压舌板压舌，无菌拭子从咽喉，扁桃体和发炎区采样。

4.  粪便：住院超过3d或入院诊断不是胃肠炎的病人，不做常规粪便培养。 

Step 7. 

中段尿与导尿

中段尿：嘱咐病人睡前少饮水，保持尿液在膀胱中4小时以上。留取早晨清洁中段尿，采集前嘱咐先用中性肥皂水和水清洁外阴及尿道口周围，留取时应排去前段尿，截取中段尿5ml。

注意：在未用抗生素之前采集标本，注意避免消毒剂污染标本。

导尿：70%酒精消毒导管采集部分，用注射器从导尿管无菌采集1-2ml 。

注意：

1.标本不能直接从引流袋放出，因引流液在袋中滞留时间太长容易孳生细菌。

2.需在换引流管24h内，无菌抽取，超过24h常常污染。

Step 8. 

组织与抗酸染色

组织：

1. 用无菌容器呈送，小样本应滴加几滴无菌盐水保持湿润，不能使组织干涸 。

2. 呈送标本尽可能多，不要呈送表面简单摩擦的拭子 。

3. 因这类标本除去普通细菌尚可能真菌、厌氧菌、结核菌等，因此培养剩余物做革兰染色、抗酸染色尤为重要。

抗酸染色：

1. 痰：量多为宜，每日1次连送3天或及时痰、夜间痰、清晨痰各一次。

2. 尿：留取24h尿10ml或12h全夜尿于洁净容器中，必须静止2h后，弃上清液，收集沉渣约10ml于无菌容器送检。

3. 脑脊液，体液（胸，腹水，关节液等），胃冲洗液及灌洗液脓液，伤口抽吸液，支气管刷子等，涂片进行抗酸染色至少2张。

小结

微生物标本应在抗生素使用前或更换用药前进行采集。如已用药，应在申请单上注明何时用药、用何种药物。微生物检验过程中的质量控制需要检验与临床各环节（临床医生，护士、护工、患者）的共同努力与紧密配合，以保证检验结果的准确与可靠，进而更好地指导与服务临床。

来源：微生物检验