首先我们先来回顾一下上一期讲到的Single cell RNA-seq 的原理，首先是2006年末端加A形成第一链cDNA的方法奠定了后来的单细胞转录组测序的问世，2009年，二代测序的发展结合末端加A的思路成就了第一篇单细胞转录组文章，2011年富集5端的带细胞Barcode的模板转换法原理启发了之后一大批单细胞转录组方法的建立。2012年，全长cDNA的单细胞转录组方法SMART-seq出现，同年，应用T7启动子的体外逆转录（IVT）方法CEL-seq被报道。
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今天我们要讲的是由这些原理所衍生出的各个方法，以及他们之间的联系，由于涉及的单细胞方法较多，方法篇我们分为上下篇。
今天这一期主要讲上篇，末端加A和体外逆转录（IVT）两类原理所衍生出的方法，在之后的下篇，将总结基于模板转换的各个方法。
【首先是基于末端加A的原理】
2013年，Quartz-seq被报道于Genome Biology，基于前面的单细胞方法，主要优化了三点：
1. 极大降低PCR副产物（主要为引物二聚体）
2. 使用一种高效的酶来来适应于单管反应3.优化了反转以及cDNA第二链合成的条件。
且文章一直强调可以区分细胞的异质性，甚至是同一细胞类型的同细胞周期的细胞基因表达的异质性，这是在前面的文章所没有涉及的分析。
由于没有看到有详细介绍该方法的推文，但是文章里提到的一些改进建议对实验来说可能会有些启发，这里就详细解读下。
针对副产物引物二聚体这一点，方法在反转那一步，最大降低了RT primer的浓度，并使用exonuclease I，将多余的引物清除，这一操作在2006年那篇文章已经用到，且被后来的很多单细胞方法使用。
针对漏网之鱼的没有被外切酶消化的引物，这里应用到抑制性PCR的方法（suppression PCR，1995年发表于Nucleic Acids Research,已经累计被引1400多次）由流程图可以看到，左边一竖排是mRNA到cDNA的过程，而右边的一小竖排是没有被外切酶消化的漏网之鱼primer，他们同cDNA一链一样在tube里经历同样的反应，末端加A，然后合成自己的二链。
当使用扩增引物扩增双链cDNA时，变性后的单链引物副产物在退火时，由于其片段较短，其一端和自己另一端杂交的速度会高于和扩增引物的杂交，因此，副产物会自己先自杂交形成“平底锅”结构而不受扩增引物扩增，这一前提是自己的两端正好互补。而cDNA由于链较长，会先和扩增引物杂交。
可以看到，二链合成那一步的primer和一开始RT的primer有一部分是一样的，以方便自杂交。同时为了提高自杂交效率，文中缩短了末端加A的时间，使非首尾配对部分（红圈处）尽量短，以提高首尾碰面的效率。同时，文章还发现利用topoisomerase V会抑制副产物形成。由于降低了副产物，也就不需要进行切胶回收，并可以一直保持在一个tube里。
另一方面，文章使用MightyAmp DNA Polymerase（商业化的是Clontech的Terra PCR Direct Polymerase）作为单管反应的最佳酶（当时）扩增cDNA，可以提高cDNA的产量，因此也可以减少PCR的循环数。在之后的文章里应该会再次提到这个酶，笔者在扩增cDNA的时候目前用的也是它，当然也有一些其他优秀的酶，如KAPA HIFI酶。
今年，该方法的进阶版Quartz-seq2被报道，这篇文章主要有两个要点：
1. 单细胞发展到2018年，当然是做高通量，加上UMI和细胞Barcode；
2. 针对目前单细胞测序的一个局限，就是一般3000-4000个细胞测一个lane，分配到每一个细胞的reads就比较少（当然土豪可以测3个4个lane），由于一般reads转UMI的转化率只有10%，于是转化出的UMI的数量就会比较少，而文章优化后（主要优化末端加A的效率）可以达到30%-50%，来满足低拷贝基因的发现。
这里作者试验了各种不同的末端加A反应的buffer，并使用了其中最优的，cDNA量提升2.88倍，并且在二链合成的步骤使用逐渐加热的方式（每秒提高0.2摄氏度到68度，MALBAC中也用到逐步升温的策略），同时试验了一系列不同浓度的RT酶，找到在保持高效率的前提下最少的酶量达到省钱的目的。自此，也就对2009年的第一篇单细胞文章做了个全方位的优化。大家可能想，既然末端加A的方法有优化，是否针对模板转换原理的也有针对各个条件体系优化的呢，当然有，在下期模板转换的时候会讲到。
我们再来简单了解下该原理部分的其他的方法。
时间回到2015年，SC3-seq(single cell single-cell mRNA 3-prime end sequencing)由日本京都大学的一个研究组所报道于Nucleic Acids Research，沿用2009年的方法，并列举了一些扩增全长和UMI的局限性来主打富集3端测序。同年，Genome Biology报道了SUPeR-seq（如图），方法使用半随机引物（T引物连接随机引物）来抓取polyA(+)(-)的RNA，同时该引物还会减少3端偏好。对于polyA(-)，文中特别强调CircRNAs。方法中通过ddATP来终止末端加A（dATP）(双脱氧链末端终止法)，文中优化了ddATP同dATP两者的比例使加A链长度达到相对最优，太长影响测序质量，太短影响二链合成效率。幸运的是该方法对rRNA的扩增偏好较小。
2017年，multiple annealing and dC-tailing-based quantitative single-cell RNA-seq (MATQ-seq)发表于NATURE METHODS，这篇文章非常值得一读，文章将自己的数据同低通量的单细胞转录组方法的金标准SMART-seq2做对比，依旧有过之而无不及。文章使用primer mix（如下）对total RNA进行反转
GATdT primers：反转poly（+）
GTGAGTGATGGTTGAGGATGTGTGGAGN5T20
MALBAC primers：反转poly（-）
GTGAGTGATGGTTGAGGATGTGTGGAGN5G3；
GTGAGTGATGGTTGAGGATGTGTGGAGN5T3
在第一链合成应用到逐渐加热的方式，并采用不变性的10次循环退火步骤来达到充分高效的合成一链。
之后对于第一链cDNA，这里采用了末端加C的策略，然后再加入MALBAC primers，合成二链。
文章中提到末端加C同G碱基丰富的MALBAC primers可以达到更高效的第二链合成，另一方面，在2013年发表的HTML-PCR就是通过末端加C高效扩增DNA。最后对于双链cDNA，使用GTGAGTGATGGTTGAGGATGTGTGGAG进行扩增，最后建库。
此外，对于rRNA，在SUPeR-seq中，由于也有随机引物，但意外地获得rRNA的量很少，这篇给到了一个方案，采用duplex-specific nuclease (DSN) 来去除来自rRNA的大部分cDNA。
【下面是基于体外逆转录的方法】
这里我们有所侧重，对于该原理提到的方法将大致了解下，CEL-seq2在上一篇推文有所提到，CEL-seq2优化了反转引物的长度，并使用SuperScript II Double-Stranded cDNA Synthesis Kit来进行一链，二链的合成（上一篇推文有同学问到二链合成的问题，这里介绍下，cDNA第二链合成的原理是用RNase H使RNA-DNA杂合链中的RNA产生切口，再用DNA Polymerase I通过切口平移(nick translation)反应进行RNA链取代合成cDNA第二链）同时优化了后期的建库方式。
这里直接来到2014年发表于SCIENCE的MARS-seq，可以看到，该方法侧重的是高通量，原理都是反转后形成一链再合成二链cDNA（使用second strand synthesis kit (NEB)）然后对其进行体外逆转录线性放大，之后建库的方式和CEL-seq相同和CEL-seq2不同（CEL-seq2通过带测序接头的随机引物去反转逆转录的RNA将测序接头引入片段），这里分了两步，先使用带已知序列接头的ssDNA（图中橘黄色片段）同逆转录出的RNA连接，然后再反转获得DNA来引入测序接头。
inDrops当然采用同样的原理，但是将反应腔室从tube换到Drop里，大大提高了通量，在建库部分，由于该文章发表于2015年，所以文中提到采用CEL-seq或MARS-seq的较老的建库方法。而CEL-seq2在2016年才出现，通过接头随机引物法将效率从直接连接法的60.9%提高到93.8%。所以今天再去做inDrops方法的时候，建库时就可以直接用带接头的随机引物来引入测序接头。
这里我们来小结一下，首先是基于末端加A/C的原理，以2009年的单细胞方法为基础，2013年的Quartz-seq采用抑制性PCR的策略使引物自杂交形成平底锅结构来降低副产物，2015年的SC3-seq，主打富集3端测序，同年的SUPeR-seq采用半随机引物去反转total RNA，2017年的MATQ -seq结合MALBAC引物和末端加C的思路达到高效合成cDNA，2018年的Quartz-seq2优化了前一代方法，做高通量并最大限度降低成本，同时优化了实验的细节（反应buffer等）。
而对于IVT这一原理，其变化较少，以2012年的CEL-seq为基础，2014年MARS-seq做了在384孔板上结合UMI、Barcode达到高通量，2015年inDrops，使用油包水的原理达到更高的通量，2016年，CEL-seq2对于IVT后的建库方法做了改进。
从历史的发展来看，每一个方法都有所提升的可能，而高通量可以说是最容易想到也最容易做到的改进，就IVT而言，高通量过程经历了从单个tube到96/384孔板再到油包水的发展。之于实验之中的优化思想，就需要大量的广阔的知识积累和运用。相信看了前面的一些方法的变化及优化，对于我们自己的实验设计不一定完全使用某一种方法，而是基于某个原理的最优策略的组合，也就是集各优化之大成来达到高效。就像前面提到的，比如要做IVT原理的高通量单细胞转录组，目前可以用inDrops配合CEL-seq2的建库思路的组合达到更高效。
还是那句话，涉及到的方法比较多，如有纰漏的地方大家及时指出，我们及时修改，大家一起进步！
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