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实验室发了50篇SCI的细胞,被我亲手害死了……

解螺旋公众号·陪伴你科研的第2714天


如何养死细胞

养细胞太难,难于上青天。本人实验室萌新一枚,进实验时间不长,养死了不少细胞,耽误了课题进展,错失了发SCI最好的时机,应导师要求,我总结出了一千零一种养死细胞的惨痛方法,附带实验室造污攻略。


本人经历过的养死细胞情况如下:

培养基种类不对,死了
血清浓度不对,死了
血清质量不行,死了
传代时胰酶消化时间太长,死了
用枪吹得太猛,死了
细胞长得太满,死了
忙于恋爱,好几天不去看细胞,死了
一天把细胞拿出来看好多次,死了
传代次数太多,细胞老去,死了
传细胞时,光顾着和同门聊剧,细菌污染了,死了
离心转速太高,死了
离心时间太长,死了
培养瓶或细胞板反复用,贴壁性不好,死了
分瓶时细胞密度太低,死了
培养瓶拿灯烤的太热,死了
培养瓶瓶盖拧太紧,死了
培养箱太热了,死了
培养箱太干了,死了
培养箱没二氧化碳了,死了
实验室停电了,死了
黑胶虫来袭,死了
还有更可怕的,还是第一千零一种死法~
实验室来了新人,死了

本人实在不才,一千零一种养死细胞的经历,我全摊上了。接下来,我应导师的再三逼迫,从实验根源上日常操作中开始检讨,我在实验室犯过的七宗罪,(由于篇幅有限,先更七宗罪)以此祭奠被我害死的细胞,顺便给实验室萌新敲个警钟。检讨如下:


1
第一宗罪:无菌观念薄弱,穿戴不规范

首先,我要反思下我进实验室的懒惰和侥幸心理,有时候进细胞房懒得换鞋,懒得戴口罩,甚至不戴手套,帽子。

我知道,换鞋是为了隔离真菌。戴口罩是为了防止口腔支原体不会污染细胞。不戴手套,根本就清除不掉手上的细菌真菌,我明知,以上懒惰造成的不规范行为,是细胞房的大忌讳,还故犯,实属罪加一等。


2
第二宗罪:实验用品乱摆放

生物安全柜里操作时,门前最忌讳堆一堆杂七杂八的东西,然而,我的枪头盒、血清、管子,培养皿、移液器、酒精喷壶、酒精灯,堆积如山,我承认我没有好好整理它们。

我知道,一旦它们堵住了安全柜门前的出风口,就会有双重不良影响。我试过,这样子实验操作起来会容易手忙脚乱,导致动作幅度过大,扰乱气流。

其次是,这些堆积的实验用品一旦挡住风口,也会扰乱生物安全柜的气流,气流变化会导致外部不洁净的空气流入,也同样会导致生物安全柜的洁净作用失效。


3

第三宗罪:乱用紫外线和酒精灭菌

我明知,紫外和酒精最多只能灭细菌,对真菌伤害很小。我不该不戴手套,仅用喷壶喷手。我知道,超净台要尽量要用酒精棉球而不是用酒精喷壶,因为用酒精棉球的话,可以在灭菌的同时把菌体从手上擦下去,而喷壶只能短暂的灭了下菌而已。

所以,我以后一定要改掉这个毛病,多用棉球,少用喷壶。

4

第四宗罪:不定期清理水浴锅

我发现,水浴锅是实验室比较容易忽视的一种存在,复苏细胞的时候,37℃对细菌真菌来说就是温床。复苏细胞后,湿漉漉的冻存管,任我再怎么喷酒精也并没有什么意义了。

所以,我发誓以后一定要,定期清洁水浴锅,在清洁时务必加一些抑菌剂。注意:我不是要往里面加双抗,水浴锅里要加2%的硫酸铜,但这比较容易腐蚀水浴锅。总之,一定要定期清洁。

5

第五宗罪:疏于管理导致水盘污染

我深知,培养箱的水盘坐拥37℃温床的水环境,水盘里若是飘着特别大的一块块霉斑,一污染就一箱子全报废了,所以,我将谨记导师教诲,培养箱要定期用0.1%的新洁尔灭或者84清洗,交替使用,防止微生物耐药。

预防水盘污染也很重要,水盘中加入饱和的磷酸氢二钠可以有效预防细菌真菌,但是需要定期加入去离子水防止析出。

6

第六宗罪:灭菌灭不好

我知道,细胞房所有在用的枪头,必须要经过湿热灭菌,用报纸包裹好枪头,这样做是因为灭菌锅一般在细胞房外面,所以要保证内部枪头盒结晶。

烤干是为了防止内部有水分,当我开启枪头盒后,有水的地方更容易被霉菌的孢子所接触附着,也就更容易污染,所以,灭菌灭不好,是我的大错。我熟读并背诵下了这个灭菌法则,如若再不按规范操作,我直播吃手机。

7

第七宗罪:细胞污染了不抢救

明知实验室条件有限,怀疑细胞污染了,我从来不抢救,实在是不懂事,为了表达我的歉意和悔改的决心,我总结出了细胞污染后的急救方法,顺便给学弟学妹参考,各位且背且珍惜。

首先要判断污染源,一旦发现细胞有污染的迹象或已污染,立即判断可能的污染源:有无操作不当?培养基、胰酶、PBS等颜色、澄清度是否正常?

其次要及时处理,若确定现有的培养基、胰酶、PBS可用,则继续使用;若无法确定则新配完全培养基、PBS、胰酶,原有的液体在确定是否污染后再做处理。

如果是霉菌污染,在以PBS润洗2~3遍后换液,无需加入高浓度双抗。培养48h后污染再次出现即可。

如果是真菌污染,在PBS润洗、换液后可加入两性霉素B(两性霉素B有细胞毒性,不推荐使用),也可加入300μg/mL氟康唑培养,污染控制后改用150μg/mL培养2~3代

如果怀疑是支原体污染,则可进行PCR检测或直接使用支原体清除试剂。也可购买环丙沙星注射液,于超净台内打开直接添加到培养基中,以20μg/mL浓度2代后改用10μg/mL浓度持续培养约2周。

不过,我还是坚持认为,如若条件允许,细胞污染后最好的处理方式是:丢弃!!!


END

撰文丨解螺旋
排版丨豨莶

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