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【类器官基因编辑】体内编辑肺干细胞,对小鼠进行持久基因校正

  2024年6月,德克萨斯大学Daniel J Siegwart教授团队在期刊《Science》(IF:44.7011在线发表题为:In vivo editing of lung stem cells for durable gene correction in mice 的高水平研究论文。


体内基因组校正有望产生持久的疾病治愈效果,然而,有效的干细胞编辑仍具有挑战性。在这项工作中,我们证明了优化的肺靶向脂质纳米颗粒(LNP)能够在干细胞中进行高水平的基因组编辑,产生持久的反应。在可激活的tdTomato小鼠体内静脉注射基因编辑LNP,可实现70%以上的肺干细胞编辑,在80%以上的肺上皮细胞中维持tdTomato表达660天。针对囊性纤维化(CF),NG-ABE8e的mRNA-sgR553X LNP介导了>95%的CF跨膜传导调节器(CFTR)DNA校正,恢复了原发性患者来源支气管上皮细胞的CFTR功能,相当于Trikafta对F508del的作用,校正了肠类器官,并校正了CF小鼠50%肺干细胞中的R553X无义突变。这些发现引入了LNP支持的组织干细胞编辑,用于疾病修饰基因组校正。


  1. 研究展示了通过优化的靶向肺部的LNP,能够在小鼠体内实现高效、持久的肺干细胞基因组编辑。这是首次在活体内实现对肺干细胞的基因编辑,并且编辑效果能够持续超过660天。
  2. 通过静脉注射基因编辑LNP,实现了在超过80%的肺上皮细胞中tdTomato基因表达的持久性,持续时间长达660天以上。
  3. 针对CF这一遗传性疾病,研究利用mRNA-sgR553X LNP实现了超过95%的CFTR基因DNA校正,并在原代患者衍生的支气管上皮细胞中恢复了CFTR功能,与Trikafta药物对F508del突变的治疗效果相当。
  4. 研究开发了一种新型的靶向递送系统,即肺部选择性器官靶向(lung SORT)LNP,能够高效地将CRISPR-Cas9内切酶和腺嘌呤碱基编辑器(ABE)传递给肺上皮细胞,包括肺干细胞。
  5. 研究对编辑细胞的长期持续性进行了量化,这是之前研究中未达到的。通过流式细胞仪分析,发现在多种肺细胞类型中,包括内皮细胞、上皮细胞、免疫细胞和干细胞,编辑水平在660天的实验期间始终保持较高。


Q1:这项研究中使用的LNP在基因编辑过程中扮演了什么角色?

A:LNP作为基因编辑工具的载体,用于将CRISPR-Cas9内切酶和ABE mRNA直接输送到小鼠的肺干细胞中。LNP保护mRNA免受降解,实现细胞靶向递送,最小化非目标编辑,并克服了包括粘液、巨噬细胞和内皮组织在内的生理障碍。这些优化的肺部靶向LNP使得基因编辑在肺干细胞中实现了高效和持久的效果。

Q2:这项研究对于CF治疗的意义是什么?

A:研究中使用的LNP能够有效地纠正CF小鼠模型中的CFTR基因突变,恢复CFTR蛋白的表达和功能。这不仅为CF提供了一种潜在的治愈性治疗策略,而且展示了通过基因编辑技术治疗遗传性肺疾病的可行性。通过LNP介导的碱基编辑,研究团队在CF患者衍生的支气管上皮细胞中实现了与Trikafta相当的治疗效果,这为CF的临床治疗提供了新的希望。

Q3:“持久性”基因编辑效果是如何实现的,并且这种持久性对于治疗遗传性疾病有何重要性?

A:研究中实现的“持久性”基因编辑效果是通过使用优化的肺部靶向LNP将基因编辑工具递送到肺干细胞中,这些干细胞具有自我更新和分化为成熟肺细胞系的能力。通过编辑这些干细胞,可以实现基因编辑效果在肺上皮细胞中的长期维持,这在研究中通过长达660天的观察得到了证实。这种持久性对于治疗遗传性疾病至关重要,因为它可能提供了一种长期甚至终身的解决方案,避免了频繁的治疗或干预,从而改善了患者的生活质量,并可能减少医疗费用。



https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/38870301/

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